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FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀
更新時間:2025-07-01
訪問次數:14361
FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數,具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點;雙鍵操作,具圖形顯示屏,內置鋰電和數據存儲,廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監測、除草劑檢測或突變體篩選,還可用于生態毒理的生物檢測,如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應,找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。
品牌其他品牌價格區間1萬-5萬
產地類別進口應用領域環保,食品/農產品,化工,生物產業,農林牧漁

    FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數,具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點;雙鍵操作,具圖形顯示屏,內置鋰電和數據存儲,廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監測、除草劑檢測或突變體篩選,還可用于生態毒理的生物檢測,如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應,找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。 FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀配備多種葉夾型號,用于不同的樣品與研究。

應用領域

 適用于光合作用研究和教學,植物及分子生物學研究,農業、林業,生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變篩選等。

· 植物光合特性研究

· 光合突變體篩選與表型研究

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 農業和林業育種、病害檢測、長勢與產量評估

· 除草劑檢測

· 教學

功能特點:

  • 結構緊湊、便攜性強,LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內,重量僅188g
  • 功能強大,是葉綠素熒光技術的結晶產品,具備了大型熒光儀的所有功能,可以測量所有葉綠素熒光參數
  • 內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序,包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP快速熒光動力學曲線等
  • 高時間分辨率,可達10萬次每秒,自動繪出OJIP曲線并給出26OJIP–test參數
  • FluorPen專業軟件功能強大,可下載、展示葉綠素熒光參數圖表,也可以通過軟件直接控制儀器進行測量

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  • 具備無人值守自動監測功能
  • 內置藍牙與USB雙通訊模塊,GPS模塊,輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表
  • 配備多種葉夾型號:固定葉夾式(適于實驗室內暗適應或夜間快速測量)、分離葉夾式(適用于野外暗適應測量)、探頭式(透明光纖探頭,具備葉片固定裝置,用于非接觸性測量監測或光適應條件下的葉綠素熒光監測)、用戶定制式等
  • 可選配野外自動監測式熒光儀,防水防塵設計

測量程序與功能

· Ft:瞬時葉綠素熒光,暗適應完成后FtF0

· QY:量子產額,表示光系統II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應狀態)或ΦPSII (光適應狀態)。

· OJIP:快速熒光動力學曲線,用于研究植物暗適應后的快速熒光動態變化

· NPQ:熒光淬滅動力學曲線,用于研究植物從暗適應到光適應狀態的熒光淬滅變化過程。

· LC:光響應曲線,用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應。

· PAR:光合有效輻射,測量環境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強(限PAR型號)。

技術參數

  • 測量參數包括F0FtFmFm、QY、QY_LnQY_DnNPQQpRfd、PAR(限PAR型號)AreaMoSmPIABS/RC50多個葉綠素熒光參數,及3種給光程序的光響應曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
  • OJIP–test時間分辨率為10µs(每秒10萬次),給出OJIP曲線和26個參數,包括F0FjFiFmFvVjViFm/F0Fv/F0Fv/FmMoAreaFix AreaSmSsNPhi_PoPsi_oPhi_EoPhi–DoPhi_PavPI_AbsABS/RCTRo/RCETo/RCDIo/RC
  • 測量程序:Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR(限PAR型號)、Multi無人值守自動監測
  • 葉夾類型:FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式

 

  • PAR傳感器(限PAR型號):80º入射角余弦校正,讀數單位µmol(photons)/m².s,可顯示讀數,檢測范圍400-700 nm
  • 測量光:每測量脈沖0.09µmol(photons)/m².s,10-100%可調
  • 光化學光:10-1000µmol(photons)/m².s可調
  • 飽和光:3000µmol(photons)/m².s,10-100%可調
  • 光源:標準配置藍光470nm,可根據需求配備不同波長的LED光源
  • 檢測器:PIN光電二極管,667–750nm濾波器
  • 尺寸大小:超便攜,手機大小,134×65×33mm,重量僅188g
  • 存貯:容量16Mb,可存儲149000數據點
  • 顯示與操作:圖形化顯示,雙鍵操作,待機8分鐘自動關閉
  • 供電:可充電鋰電池,USB充電,連續工作48小時,低電報警
  • 工作條件:055℃,095%相對濕度(無凝結水)
  • 存貯條件:-10–60℃,095%相對濕度(無凝結水)
  • 通訊方式:藍牙+USB雙通訊模式
  • GPS模塊:內置
  • 軟件:FluorPen1.1軟件,用于數據下載、分析和圖表顯示,輸出Excel數據文件及熒光動力學曲線圖,適用于Windows 7及更高操作系統

操作軟件與實驗結果

產地:捷克

應用案例:

    2017年4月,美國國家航空航天局(NASA)新一代*進植物培養器(Advanced Plant Habitat,APH)搭載聯盟號MS-04貨運飛船抵達空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素熒光儀在其中開展植物生理學及太空食物種植(growth of fresh food in space)的研究。

參考文獻

  • F Dang, et al. 2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810
  • N Moghimi, et al. 2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany 70(12): 3357–3371
  • M Rafique, et al. 2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management 247: 672-680
  • P Soudek, et al. 2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosa plants. Environmental and Experimental Botany 164: 84-100
  • JA Pérez-Romero, et al. 2019. Investigating the physiological mechanisms underlying Salicornia ramosissima response to atmospheric CO2 enrichment under coexistence of prolonged soil flooding and saline excess. Plant Physiology and Biochemistry 135: 149-159
  • D Shao, et al. 2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflora to long-term wave exposure. Annals of Botany, DOI: 10.1093/aob/mcz067
  • C Cirillo, et al. 2019. Biochemical, Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinus and Viburnum lucidum to NaCl and CaCl2 Salinization. Front. Plant Sci. 10:742

附:OJIP參數及計算公式

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

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